稀释倍数怎么算在线播放_稀释计算三个公式(2024年11月免费观看)
喷雾农药兑水指南:轻松搞定稀释倍数! 很多花友和果友们在兑农药时都会犯愁,不知道该怎么计算稀释倍数。别担心,今天我来给大家详细讲解一下! 稀释倍数怎么算?首先,我们得搞清楚农药的稀释倍数。传统的喷雾农药一般是2桶水每亩,每桶水大约是15升。如果农药标签上写着1000倍液,那就意味着15000毫升(15升)的水配1毫升的农药。所以,1000倍液其实就是15克(毫升)配一桶水。 制剂用药怎么兑? 有些农药是按亩来算的,比如10-20克/亩。这时候我们就可以按照一亩地打两桶水(30升)来算,每桶水里加入5-20克/亩的农药就行了。 小贴士 以上方法仅供参考,具体用量还是要看农药的标签说明。不同品牌的农药稀释倍数可能有所不同,大家在兑药时一定要仔细阅读说明书哦! 希望这些小技巧能帮到大家,让你们的植物和果实都能健康成长!如果有任何问题,欢迎留言讨论!𑰟
微生物检测的四种方法,你知道几种? 检测方法1:生长量测定法 体积测量法 通过测量一定体积的培养液中菌丝的量来反映微生物的生长状况。这种方法简单快速,但误差较大。 称干重法 ⚖️ 利用离心或过滤法进行测定。一般干重为湿重的10-20%。这种方法较为繁琐,通常用于获取微生物产品为菌体时,如干酵母、饲料等。 比浊法 슠 微生物的生长会引起培养物混浊度的增高。通过紫外分光光度计测定一定波长下的吸光值,判断微生物的生长状况。该方法主要用于发酵工业菌体生长监测。 检测方法2:微生物计数法 染色计数法 芠 为了弥补一些微生物在油镜下不易观察计数,而普通计数法又无法区分死细胞和活细胞,采用染色计数法。常见染料包括中性红、台盼蓝、甲基蓝、美蓝等。 液体稀释法 ꊠ 对未知菌样做连续十倍系列稀释,根据估计数,从最适宜的三个连续的10倍稀释液中各取5毫升试样,接种1毫升到3组共15只装培养液的试管中,经培养后记录每个稀释度出现生长的试管数,然后查最大或然数表MPN得出菌样的含菌数,根据样品稀释倍数计算出活菌含量。 平板菌落计数法 銠 最常用的活菌计数法,不仅可以得出菌液中活菌的含菌数,还可以将菌液中的细菌进行分离培养,获得单克隆。 试纸条法 在平板计数法的基础上,发展了试纸条产品以供快速计数。该方法快速准确,避免了平板计数法的人为操作误差。 检测方法3:生理指标法 测定含氮量 大多数细菌的含氮量为干重的12.5%,根据含氮量㗶.25,即可测定粗蛋白的含量。含氮量的测定方法,包括用硫酸、过氯酸、磷酸等消化法和杜马斯法。 测定含碳量 𑊠 将少量样品混入1毫升水或缓冲液中,用2毫升2%的K2Cr2O7溶液在100℃下加热30分钟后冷却,加水稀释至5毫升,在580nm的波长下测量吸光度,绘制标准曲线计算生长量。 还原糖测定法 슠 还原糖通常是指单糖或寡糖,可以被微生物直接利用,通过还原糖的测定可间接反映微生物的生长状况,常用于大规模工业发酵生产上微生物生长的常规监测。 其他生理物质的测定 核酸、ATP等含量以及产酸、产气,产CO2、耗氧、产热等指标,都可用于生长量的测定。
𘧴륤吸收法:快速测定蛋白质浓度的秘诀 젦⧴⧴륤吸收法的奥秘:快速测定蛋白质浓度 亲爱的实验室伙伴们,今天我们来揭秘一种在实验室中广泛使用的技术——紫外吸收法,它可是测定蛋白质浓度的得力助手哦!ꊊ 原理篇 首先,蛋白质在紫外光区(280nm)有一个特定的吸收峰,这主要是因为蛋白质中的色氨酸、酪氨酸和苯丙氨酸等氨基酸残基。通过测量样品在280nm处的吸光度,并结合蛋白质的摩尔吸光系数,我们就可以轻松计算出蛋白质的浓度啦! 젦作篇 1️⃣ 准备阶段:确保紫外分光光度计已经预热并校准好,准备好所需的缓冲液和蛋白质样品。 2️⃣ 稀释样品:将蛋白质样品进行适当的稀释,确保吸光度在可测范围内(一般不超过1.0)。 3️⃣ 测定吸光度:将缓冲液作为空白对照,测量样品在280nm处的吸光度。 4️⃣ 计算浓度:根据公式“蛋白质浓度 = (吸光度 / 摩尔吸光系数) 㗠稀释倍数 㗠1000”计算出蛋白质的浓度。 ᠦ事项: 摩尔吸光系数会因蛋白质种类和实验条件而异,确保使用正确的数值。 避免使用含有其他紫外吸收物质的溶液作为缓冲液。 注意仪器的保养和清洁,避免污染影响实验结果。 ᠥ㫯如果样品中含有核酸(DNA或RNA),它们也会在260nm处有吸收峰。因此,在测定蛋白质浓度时,可以同时测量260nm和280nm处的吸光度,通过比值法来评估样品的纯度。 如果你的实验对蛋白质浓度的精确度要求很高,可以考虑使用其他更精确的方法(如BCA法、Lowry法等)进行验证。 通过这篇笔记,希望大家对紫外吸收法测定蛋白质浓度有了更深入的了解。在实验室里,掌握这些基本的实验技巧和方法,能帮助我们更准确地获取实验数据,为科研之路添砖加瓦!
抑菌试验全攻略:操作步骤与注意事项 抑菌试验1:平板计数法 操作步骤:将一定量的稀释样品涂布在平板上,形成肉眼可见的单菌落,并统计单菌落数。根据稀释倍数和取样接种量换算出样品中的含菌数。通过与组内或组间比较,得到样品对待测菌株的抗菌性能。 适用范围: 固体类:薄膜、金属块、镀膜玻璃等,测试面积需大于等于1.5㗱.5cm,大于该面积按比例添加菌液。 液体类:样品量根据测试时样本的溶剂和浓度而定,浓度一般不超过菌液的10%。 结果判定:进行3个重复实验计算平均值。 抑菌试验2:抑菌圈实验 操作步骤:抑菌圈实验是测定抗菌性能的常用方法,主要用于测定样品对细菌、霉菌、酵母菌的抑菌作用。主要方法包括K-B法、打孔法和牛津杯法。 适用范围: 固体类:薄膜、布料、金属块、纸片、凝胶等。制样要求:金属块、凝胶类样本须制备成统一大小的圆形。布料、纸片类样本可裁剪为圆形。若样品太脆无法裁剪,可称取相应质量样品,用PBS浸泡过夜,制备成圆形药敏片。 液体类:根据测试时样本浓度而定,一般为1 mL/种菌。 粉末类:使用打孔器进行打孔,用粉末填充满所打的孔中,一般最少需要1g粉末样品。 结果判定:每个抑菌圈测量三次计算平均值。 抑菌试验3:OD值测定 操作步骤:将待测样品与菌液共培养后,细菌生长的培养液浊度与细菌浓度成正比,使用紫外分光光度计测定培养液的OD值。 适用范围: 固体类:薄膜、布料、金属块、纸片、凝胶等。 液体类:要求样本溶液无色或者淡色。 结果判定:绘制生长时间与OD值的生长曲线图,每个点测量3次OD值。 抑菌试验4:MIC值 操作步骤:最低抑菌浓度(MIC):能够抑制培养基内细菌生长的最低药物浓度。 适用范围: 液体类:样品溶液需完全溶解且无色或者淡色,使用微孔板法。 粉末类:粉末必须可溶,根据CLSI标准,最大母液浓度512ug/ml。 结果判定:MIC结果为肉眼可见无细菌生长的最小浓度,需进行三次重复实验。 堥ꌦ事项: 培养基配置:要求培养基灭菌温度不宜过高,培养基含糖量也不能太高,否则会导致焦化,影响实验结果判断。 常规菌株:一般不需要设置抗生素对照组。
美乐棵施肥枪,校准秘籍! 大家好,今天我想和大家聊聊美乐棵的自动稀释喷施器,也就是我平时叫的“施肥枪”。很多人买之前都会担心一个问题:说明书上说,不同水压环境下,同一刻度的稀释比例可能会差好几倍!这确实让人头疼,尤其是对于那些喜欢偷懒的朋友们。 其实,我自己也是个懒人,所以我的做法是尽量把稀释度调高一点,这样日常使用频率就高一些,不用每次都纠结。如果你不怕麻烦,可以试试在家自己调试一下参数。具体方法是:先设定好固定的稀释度,然后在喷施器里装上500毫升水,把喷出来的混合溶液用桶装起来,测量实际是多少升,再算出校正后自家实际的稀释比。 说实话,我还是有点心疼我的花花草草们,所以还是决定测试一下。第一次测试是在露台上,用自来水龙头,肥料液体300毫升,刻度50,实际出液量12.5升,实际稀释比例是40倍。按照说明书,低水压范围是60倍,高水压范围是20倍,我的实际数据正好居中。 第二次测试是在井水龙头上,肥料水0.175升,刻度50,实际出水约10升,稀释比例是57.14倍。立刻重复一次,得到的稀释倍数还是一样的。 另外,施肥时加了“黑水”,用水枪时肉眼可见水的颜色在无色和黑色之间变化。不同的肥料溶解度不一样,500克水能很好地溶解30克花多多或者磷酸二氢钾,但那个“黑水”15克是无法溶解的。不能溶解的晶体可能会堵塞水枪出口,所以大家最好先用杯子预溶解。 最后,肥料水容器上的那个刻度非常准。我用克秤检查过,花多多的一平勺1克也非常准。 希望这些小技巧能帮到大家,让你的花草们更健康地成长!🀀
细胞计数板使用指南:简单又准确的方法 细胞计数板的正确使用 首先,确保你的细胞计数板像图2展示的那样,中间有格子的部分被盖玻片覆盖。注意,盖玻片要搭在两条棱上(图中两个处),这样每个4x4区域的体积就是0.1mmⳣ千万别先滴加细胞悬液再盖盖玻片,否则细胞分布会不均匀。 砧𛆨悬液的准备 我通常取200微升的细胞悬液,加入800微升的PBS,也就是稀释5倍后搅拌均匀,作为计数的细胞悬液。这样做可以防止细胞数目过多,整个视野里大概有50个细胞,计数起来非常方便。 砦 细胞悬液 在加细胞悬液前,先用20微升的移液枪吹打均匀,然后在盖玻片边缘滴加,量刚好填满一侧计数小室为宜。加好后就不要动盖玻片了,记住这一点很重要。 细胞计数的方法 我一般数四角的4个4x4的格子,公式是:(1+2+3+4)细胞数/4*稀释倍数*10000,单位是个/ml。注意以下几点: 压线的细胞,数上不数下,数左不数右; 成团的细胞算一个; 如果四个小格中细胞数相差大于20,需要重新滴加悬液计数。 젧耩的计算 假设细胞悬液的密度为200万个/ml,每孔铺4000个,200微升培养基,稀释时我一般这样计算:应将细胞悬液稀释到4000*(1000/200)=2万个/ml,也就是200万到2万,应稀释100倍。假设铺120个孔,共需要24ml细胞悬液,为了防止加的不均匀,我一般多稀释点,按40ml算,应取400ul细胞悬液,加39.6ml培养基,每孔加200ul,即可达到目标细胞密度。记得稀释前将细胞悬液吹打均匀。 通过这些简单的步骤,你就能准确无误地完成细胞计数啦!ꀀ
什么时候用十万分之天平? 在化学实验中,选择合适的天平至关重要。젤𘋦露些关键点,帮助你决定何时使用十万分之天平: 称量精度要求:如果你的实验需要相对误差≤0.1%,那么你需要一个更精确的天平。 万分之一天平的局限性:使用万分之一天平进行二次称量,误差可能达到Ɒ.0002g,这可能不足以满足高精度称量的需求。 称量范围的计算:称量范围可以通过0.0002g㷰.1%来计算,结果为0.2g。当称样量小于0.2g时,万分之一天平可能无法满足精密称量的要求。 十万分之一天平的使用:当称样量小于0.02g时,理论上应该使用百万分之一的天平。如果没有百万分之一的天平,可以考虑放大称样量或增加稀释倍数来解决问题。 审计中的考虑:在审计过程中,审计老师可能会提出类似的问题,帮助你更好地理解如何选择合适的天平。 这些问题不仅适用于化学实验,也适用于其他需要精确称量的领域。希望这些信息能帮助你做出更明智的选择!က
细胞计数全攻略:从原理到实践 细胞计数是生物学实验中一项基础但至关重要的技术。它不仅用于计算细胞数量,还能帮助我们了解细胞的存活率和生长状态。以下是详细的实验步骤和注意事项,供大家参考。 实验原理 细胞计数的核心是通过计算一定体积细胞悬液中的细胞数目,来换算出每毫升细胞悬液中的细胞数量。我们通常使用血球计数板来进行计数,该计数板由四个大正方形组成,每个大正方形包含16个小格,每个小格的体积为0.0001毫升。 实验步骤 准备计数板:用酒精喷洒计数板,然后用吸水纸擦干备用。 取样:将充分混匀的细胞悬液取10微升,加入计数板的上样口,确保细胞悬液铺满整个网格,不溢出、不过少且无气泡。如果需要进行细胞存活率测试,可以加入适量的Trypan blue进行染色,但计算时要乘以相应的稀释倍数。 镜下计数:在显微镜下计数四个大方格中的细胞数。注意,2个以上细胞组成的细胞团按一个细胞计算,压线的细胞记上不记下,记左不计右,以避免重复计数。 计算:将四个大方格中的细胞数相加,乘以稀释倍数,再乘以104,然后除以4,即可得到每毫升细胞悬液中的细胞数量。 铺板计算:假设需要铺40孔,每孔100微升,每个孔细胞数为3000个。如果四个正方形的细胞计数分别为55、60、51、49,则每毫升细胞悬液中的细胞数为(55+60+51+49)/4㗱04=54㗱04。目标细胞数为3000㗴0=12㗱04个,总体积为100㗴0=4毫升。因此,需要取0.222毫升细胞悬液,并加入3.778毫升培养基,每孔再加入0.1毫升。 注意事项 计数板和盖玻片使用前后均应用酒精喷洒后吸水纸擦干。 取样前应充分混匀细胞悬液,以减少误差。 镜下计数时,遇到2个以上细胞组成的细胞团,应按单个细胞计算。如果细胞团占10%以上,说明消化不充分;或细胞数少于200个/10毫米Ⲧ多于500个/10毫米Ⲧ说明稀释不当,需重新制备细胞悬液并进行计数。 实验结论 通过以上步骤,我们可以准确地计算细胞悬液中的细胞数量,了解细胞的存活率和生长状态。希望这些信息对大家的实验有所帮助,祝大家实验顺利!
一滴水到底有多少毫升?犥朋友们!今天咱们来聊聊一个看似简单却有点复杂的问题:一滴水到底有多少毫升?这个问题看似简单,但其实很重要,特别是在做实验或者配药的时候。 吸管实验:一滴水的秘密 ꊊ首先,你需要一根吸管。普通的娃哈哈吸管或者优酸乳的吸管都行,别用那种手指粗的安慕希或者雪王吸管哦。然后,你可以用这些吸管来滴水,看看一毫升水大概是多少滴。一般来说,一毫升水大概是20到25滴。如果你用带针头的针管来滴,那可能需要25滴一毫升。 配药计算:滴水的数学 如果你需要配药,比如说你需要配2000倍的药液,那就可以用500毫升的瓶子来装。然后滴5滴药液。计算公式是这样的:(最终需要的容积,比如500毫升)㷯耩倍数,比如2000倍)㷯㷲0,这是一滴多少毫升的计算公式)=(5,这是需要多少滴)。 例子:500毫升瓶子,稀释3000倍,需要多少滴? 来,我们举个例子。如果你有一个500毫升的瓶子,需要稀释3000倍,那你需要多少滴呢?计算方式是:500㷳000㷯㷲0)=3.333333333滴。是不是很简单? 一次性带刻度吸管:更方便的测量 其实,现在市面上有那种一次性带刻度的吸管,还有小型的打针针管也有刻度。这两个工具都能帮你更方便地测量一滴水的量。不过,记得别用手指粗的雪王吸管来滴哦! 总结:一滴水的科学 所以,一滴水大概是多少毫升呢?一般来说,一毫升水大概是20到25滴。如果你需要配药或者做实验,记得用这个公式来计算你需要多少滴。这样就能确保你的实验或者配药准确无误啦! 希望这篇文章对你有帮助!如果你还有其他问题,欢迎留言讨论哦!
ꆯlin-酚法测蛋白实验报告 生物化学实验报告来啦!这次我们尝试了Folin-酚试剂法来测定蛋白质的质量。 ᠥꌥ理: Folin-酚法是基于蛋白质的肽键在碱性条件下与铜离子反应,生成紫红色的蛋白质-铜络合物。这个复合物中的某些残基能还原两分试剂中的磷铜酸和磷钨酸,生成蓝色化合物。蓝色深浅与蛋白质含量成正比,从而可以测定蛋白质的含量。 젥ꌦ꤯1️⃣ 取7支试管,按下表操作加入不同量的碱性铜试剂、蛋白质标准溶液和稀释的血清样品。 2️⃣ 加完碱性铜试剂后立即摇匀,室温放置10分钟。 3️⃣ 加入两分试剂,迅速混匀,室温放置30分钟。 4️⃣ 以空管为对照,读取各管吸光度。 5️⃣ 由样品的吸光度值,对照标准曲线查出样品蛋白质含量。 实验结果: 我们制作了标准曲线,并测得了样品的吸光度。通过对照标准曲线,我们成功查出了样品的蛋白质含量。 分析讨论: 实验中要注意试剂的稳定性和操作时间的精确控制,否则会影响实验结果。另外,由于样品是稀释的血清,所以在计算蛋白质浓度时要乘以稀释倍数。 这次实验让我们更深入地了解了Folin-酚法测蛋白质含量的原理和方法,真是太棒了!
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